CARTILLA DE INFORMACIÓN PARA PROFESIONALES DE LAS CIENCIAS VETERINARIAS

El Instituto de Zoonosis “Luis Pasteur”  dependiente del Ministerio de Salud del Gobierno de la Ciudad de buenos Aires desea informar  por este medio, y a través del Consejo Profesional de Médicos Veterinarios (Ley 14072), a todos los profesionales veterinarios acerca de los servicios diagnósticos que está en condiciones de brindarles, así como todo lo concerniente  al envió de las muestras para las correspondientes determinaciones

 

RABIA

Técnicas diagnosticas utilizadas

  • IFD
  • Inoculación ratones lactantes
  • RT-PCR

 

Muestras, tipo y remisión

Animales vivos

• Caninos y felinos: Se recomienda mantener aislado al animal sospechoso y comunicarse con el IZLP de inmediato para efectivizar el traslado, en caso de ser necesario.
• Quirópteros: Se debe aislar al o los animales y evitar que se escape, cubriéndolos con recipiente adecuado (caja, balde, etc) y comunicarse con el IZLP, para su traslado. Deben hacerse llagar en el menor tiempo posible al Instituto. Toda maniobra debe realizarse con extremo cuidado, para evitar lesiones, se recomienda utilizar pinzas.


Cadáveres

Si el animal es de pequeña talla puede remitirse el cuerpo entero refrigerado y colocado en forma que evite el escurrimiento de líquidos. Esto es válido para cualquier especie


• Tejidos Órganos:
o Cabeza de animal sospechoso separada del cuerpo a la mitad del cuello, acondicionada según instrucciones de “cadáveres”
o Encéfalos bien conservados: Debe incluir cerebro, Asta de Amón (hipocampo), cerebelo. y medula oblonga. Remisión: triple envase para muestras biológicas en condiciones de refrigeración.
o Murciélagos: enteros en envase hermético de plástico, en condiciones de refrigeración. No son aptos especímenes momificados.
o Encéfalos en condiciones de descomposición leve a avanzada.
o NO UTILIZAR conservadores como FORMOL ni desinfectantes químicos.
Ante cualquier consulta, comunicarse al servicio de rabia:
TE: 4958-9941/43/14
Mail: Esta dirección electrónica esta protegida contra spam bots. Necesita activar JavaScript para visualizarla

 

DOSAJE DE ANTICUERPOS RÁBICOS

Técnicas diagnosticas utilizadas 
Serología: Elisa
Se realiza en humanos (control de tratamientos pre y post exposición), en  perros y gatos en situación de riesgo.

 

DIAGNÓSTICO DE INFLUENZA A

RT-PCR: Vivas: hisopados cloacales (con hisopo de dacrón en 1 ml de fisiológica estéril, o tubo para transporte viral) o remitir cadáver para necropsia refrigerados hasta 48 hs (luego a -70ºC), especialmente en aves (Anátidos: patos, gansos, Charadriiformes: gaviotas y Falconiformes: águilas, halcones, chimangos, caranchos).

 

DIAGNÓSTICO DE ENCEFALITIS DE SAN LUIS

Técnicas diagnosticas utilizadas

RT-NtdPCR: grupos de mosquitos (mínimo n=10) capturados con trampa tipo CDC, refrigerados hasta 48 hs (luego a -70ºC).

 

DIAGNÓSTICO DE ENCEFALITIS DEL NILO OCCIDENTAL

Técnicas diagnosticas utilizadas

 

  • RT-NtdPCR: cadáver para necropsia refrigerados hasta 48 hs (luego a -70ºC), especialmente en aves Passeriformes: gorriones, calandrias, Benteveo, hornero, zorzales.
  • RT-NtdPCR: grupos de mosquitos (mínimo n=10) capturados con trampa tipo CDC, refrigerados hasta 48 hs (luego a -70ºC).

             
TOXOPLASMOSIS

Técnicas diagnosticas utilizadas
     

Serológicas: aglutinación directa,  inmunofuorescencia  indirecta (IFI)  

Muestras: tipo y remisión
o Para serología
o Suero: sin hemolisis, volumen mayor a 0,5 ml refrigerado o congelado
o Sangre entera. En tubos de Kahn (NO REMITIR EN JERINGAS). No hemolizada, volumen mayor a 3.0 ml, sin anticoagulante
Remitir, en forma refrigerada, dentro de las 5 horas post-extracción
o LCR/ humor acuoso: remitir un volumen mayor a 0,5 ml, extraído en forma estéril, refrigerado o congelado

 

LEPTOSPIROSIS

Técnicas diagnosticas utilizadas
o Serológicas :
Prueba de Martin y Petit (MAT): Microaglutinación en tubo
o Bacteriológicas: cultivo-Observación directa
o PCR

Muestras tipo y remisión
o Para serología
-Suero: sin hemolisis, volumen mayor a 0,5 ml refrigerado o congelado
-Sangre entera. En tubos de Kahn (NO REMITIR EN JERINGAS). No hemolizada, volumen mayo a 3.0 ml, sin anticoagulante. Remitir en forma refrigerada.
                      -PCR: Remitir el órgano (Hígado y / o riñón) entero o trozo del mismo en un colector estéril. Se deberá conservar hasta su envío  refrigerado (no más de 24 hs de tomada la muestra) o congelado a -20º C.

 

CLAMIDIOSIS

Técnicas Diagnósticas Utilizadas

• Citológicos: (coloración de Giemsa)
• Histoinmunoquímicos: IFD
• Elisa
• PCR

 

PSITACOSIS

Muestras tipo y remisión
• En aves vivas
o Hisopados oculares: frotar cuidadosamente durante 10 a 30 segundos la superficie interna de los parpados (utilizar un hisopo para cada ojo), realizar improntas en portaobjetos limpios y desengrasados, previamente identificados y marcados en círculos o cuadrículas con lápiz indeleble. Dejar secar a temperatura ambiente y fijar con metanol (alcohol metílico) durante 5 minutos. Si se va a solicitar la técnica citológica, o con acetona para inmunofluorescencia. En ambos casos conservar en heladera (24 a 48 hs) o congeladora (hasta 60 días) hasta su remisión al IZLP
o Para la técnica de ELISA se recomienda utilizar los hisopos provistos en el Kit comercial correspondiente y remitir el vial con el medio de transporte. De no ser inmediato esto, conservar en heladera hasta un máximo de 7 días. NO CONGELAR
o Hisopados Cloacales: para la técnica de ELISA utilizando los hisopos y el medio de transporte provistos por el kit comercial, para la técnica de  PCR colocados en tubos libres de ARNasas/nucleasas  para Biología molecular provistos por el laboratorio. NOTA: los hisopos de dacron también los provee el Instituto.

• En cadáveres
o Para citología/ inmunofluorescencia: remitir improntas de órganos (bazo, pulmón, sacos aéreos, hígado).
o  Para ELISA. Remitir hisopados de órganos en el medio de transporte provistos por el kit comercial o porciones de órganos (bazo, pulmón, sacos aéreos, hígado)
o Para PCR; órganos enteros,

 

BRUCELOSIS CANINA

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Serología: inmunodifusión en gel de agar (AGID) y RSAT con y sin 2ME
Cultivo: hemocultivo, cultivo de biopsia o material de aborto o hisopados vaginales

PCR
Muestras tipo y remisión
• Para Serología  
o Sangre entera: en tubos de PPMA con gel separador. No hemolizada, volumen mayor a 3.0 ml. Sin anticoagulantes. Remitir en forma refrigerada dentro de las 5 horas post extracción.
o Suero: sin hemolisis, volumen mayor de 5,5 ml, refrigerado o congelado.
o Para cultivo: traer animal al instituto o muestra de 2ml de sangre en frasco para hemocultivo, extraída de manera aséptica
o Para PCR
o Solicitar tubos libres de ARNasas/Nucleasas al Instituto Pasteur.
o  Hisopados vaginales/flujos
o Uso de hisopos de dacron o viscosa, colocar flujo directamente en el tubo o realizar un hisopado vaginal profundo. Cortar el hisopo y cortarlo permitiendo el correcto cierre del tubo.
o  Sangre entera
o Colocar 0,8 ml de sangre entera en el tubo provisto con citrato de sodio. Homogeneizar bien, rotular y refrigerar o congelar.
o Orina de machos
o Colocar 1,5 ml en dos tubos. Rotular, congelar/refrigerar
o Material abortado ( fetos/envolturas/loquios etc) colocar en un frasco estéril y remitir al Instituto
 

CAMPILOBACTERIOSIS

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Observación directa – Cultivo

Muestras tipo y remisión
Hisopado rectal remitido dentro de las 4 horas en medio de transporte Stuart o preferentemente Cary Blair de transporte. En su defecto conservar en el medio de transporte a 4º C no más de 24 horas.

 


TOXOCARIASIS ANIMAL

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Observación directa –  Enriquecimiento – técnica de flotación de BREMBROOK

Muestras tipo y remisión
Materia fecal conservada en formol al 5%

 

TOXOCARIASIS HUMANA

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Serología: Elisa

Muestras tipo y remisión
Sangre entera o suero libre de hemólisis. ( Cantidad no inferior a 0,2 ml.)

 

GIARDIASIS

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Observación directa – Técnica de flotación con BEMBROOK

Muestras tipo y remisión
Materia fecal fresca, refrigerada o con formol al 5%

 

FILARIASIS

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Observación directa
PCR

Muestras tipo y remisión
Sangre entera con anticoagulante, preferentemente EDTA, sin refrigerar y remitida dentro de las 24 horas de extraída la muestra.

 

MICOSIS

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Observación directa – Cultivo

Muestras tipo y remisión


MICOSIS PROFUNDAS

De animal vivo: lavados nasales, gástricos y/o bronquiales, efectuados con solución fisiológica o agua destilada estéril; punciones, biopsias, secreciones. Todos estos materiales deben ser remitidos refrigerados, dentro de las 24 horas en forma refrigerada.

De cadáveres: muestras de pulmón, ganglios y/o bazo extraídas dentro de las 4 horas de fallecido el animal, empleando técnicas que garanticen la esterilidad. Remitirlas dentro de las 24 horas en forma refrigerada.

 

MICOSIS SUPERFICIALES

Material de raspado suave (pelos y/o escamas), remitidos en tubos estériles, recolectores con tapa a rosca.

 

MICOBACTERIOSIS

Técnicas Diagnósticas Utilizadas
Baciloscopía – Cultivo

Muestras tipo y remisión
De animal vivo: lavados nasales, gástricos y/o bronquiales, efectuados con solución fisiológica o agua destilada estéril; punciones, biopsias, secreciones. Todos estos materiales deben ser remitidos refrigerados, dentro de las 24 horas en forma refrigerada.
De cadáveres: muestras de pulmón, ganglios, hígado, intestino, riñón, bazo y/o cualquier otro órgano a criterio profesional. Todas extraídas dentro de las 4 horas de fallecido el animal, empleando técnicas que garanticen la esterilidad. Remitirlas dentro de las 24 horas en forma refrigerada

Importante: en todos los casos, las muestras deberán remitirse en envases con cierre hermético (recolectores estériles de plástico, frascos descartables, etc.) NO ENVIAR MATERIAL EN JERINGAS.

 

ZOONOSIS BACTERIANAS Y PARASITARIAS TRANSMITIDAS POR VECTORES

 

ARTROPODOS DE INTERES SANITARIOS

Identificación taxonómica de garrapatas, pulgas y vinchucas.
Muestras
Artrópodos: la recolección del ejemplar se hará en alcohol medicinal a 96º (o etanol al 70%) en un tubo con tapa a rosca rotulado con lápiz y la conservación de la misma se hará a temperatura ambiente.

 

RICKETTSIOSIS

Muestras
Garrapatas: la recolección del ejemplar se hará en alcohol medicinal a 96º (o etanol al 70%) en  tubo con tapa a rosca rotulado con lápiz y la conservación de la misma se hará a temperatura ambiente.
Se diagnosticarán solo las garrapatas halladas en humanos (prendidas en la piel o en la ropa).
Caninos: se realizará en sangre entera con anticoagulante EDTA recolectada en microtubos de 1,5 ml libre de nucleasas, y conservada a 4ºC hasta las 24 hs o a -20ºC pasado dicho periodo. Dado que la rickettsemia es de muy corta duración, no es recomendable.
Técnicas Diagnósticas Disponibles: PCR

 

ANAPLASMOSIS/EHRLICHIOSIS

Muestras
Garrapatas: idem rickettsiosis.
Caninos: se realizará en sangre entera con anticoagulante EDTA recolectada en microtubos de 1,5 ml libre de nucleasas, y conservada a 4ºC hasta las 24 hs o a -20ºC pasado dicho periodo.
Técnicas Diagnósticas Disponibles: PCR.

 

LEISHMANIASIS

Técnicas Diagnósticas Disponibles
Serología: Test Inmunocromatográfico
PCR
Observación  directa (citología)
Muestras
Serología: sangre entera o suero (volumen no menor a 0,2ml).
PCR y observación directa: punción de linfonódulos, médula ósea, hígado y bazo en microtubos libres de nucleasas. Raspaje o hisopado de lesiones.

 

FIEBRE Q

Muestras (caninos y felinos, eventualmente humanos)
Sangre entera sin anticoagulante o suero libre de hemólisis en cantidad no menor a 0,2ml, debidamente refrigerados.
Técnicas Diagnósticas Disponibles: Inmunofluorescencia indirecta (IFI)

 

NEORICKETTSIOSIS

Muestras (caninos)
Punción aspiración de linfonódulos infartados en microtubos de 1,5 ml libre de nucleasas.
Hisopado rectal en microtubos de 1,5 ml libre de nucleasas con medio de cultivo, a 4ºC (<24 hs) o -20ºC.
Técnicas Diagnósticas Disponibles: PCR

 

BARTONELOSIS

Muestras
Felinos: Sangre entera con anticoagulante EDTA en microtubo de 1,5 ml libre de nucleasas.
Caninos: Sangre entera con anticoagulante EDTA (tener en cuenta que la bacteriemia es de corta duración) y biopsia de válvula cardíaca con suero fisiológico estéril, en microtubo de 1,5 ml libre de nucleasas.
Técnicas Diagnosticas Disponibles: PCR

 

BORRELIOSIS

Muestras
Caninos: Sangre entera con anticoagulante EDTA en microtubo de 1,5 ml libre de nucleasas.
Técnicas Diagnosticas Disponibles: PCR

 

CONDICIONES GENERALES

Horario de recepción: 8.00 a 13.00 de lunes a viernes, muestras por sospecha de  rabia las 24 hs todos los días.
Datos complementarios:
En cualquiera de los casos citados, se deberá acompañar de los siguientes datos:
Datos de propietario del animal
Nombre y apellido:
Nº de documento de identidad:
Domicilio:                                          Teléfono:
Datos del animal:
Especie:         Raza:               Sexo:                     Edad:
Sintomatología:                     Tratamientos efectuados:
Muestras:
Tipo de análisis solicitado:
Fecha y hora de extracción de muestra:
Forma de extracción:
Conservantes utilizados:

 

ANTE CUALQUIER DUDA COMUNICARSE CON EL DEPARTAMENTO DE  DIAGNOSTICO Y PRODUCCION DE BIOLOGICOS.
INSTITUTO DE ZOONOSIS LUIS PASTEUR
DIAZ VELEZ 4821 (1405) CIUDAD DE BUENOS AIRES
TELEFONOS 4958-9941 Ó 4958-9943
LOS SERVICIOS SON GRATUITOS